為確保產(chǎn)品的性能和無憂的操作,使用前請仔細閱讀本手冊,有任何疑問請咨詢本公司售后技術支持或當?shù)氐匿N售人員(聯(lián)系方式見附錄)。
1.產(chǎn)品介紹
CNBr Focurose 4FF是經(jīng)過溴化氰活化后含有氰酸酯基團的快流速純化介質,適用于偶聯(lián)蛋白質、多肽、核酸等含有氨基的生物分子。在生物醫(yī)藥純化工藝中經(jīng)過反復的驗證,得到了廣泛的應用。
特點:
a.應用廣泛,可適用于偶聯(lián)含氨基的生物類大分子。
b.多點偶聯(lián),簡單、靈活、快速、有效,能高效的維持生物分子的生物學活性及穩(wěn)定性。
c.流速快、產(chǎn)率高、易于放大。
表1:介質性能參數(shù)
基質 | 高度交聯(lián)4%的瓊脂糖 |
粒徑范圍 | 45-165μm |
平均粒徑 | 90±5μm |
結合載量 | 25-40mg(Trypsinogen)/ml(介質) |
pH穩(wěn)定性* | 3-11(長期) 2-11(短期) |
流速 | ≧250cm/h |
操作壓力 | ≤0.3MPa |
貯存溶液 | 100%丙酮 |
貯存溫度 | 4-8℃ |
*:穩(wěn)定性取決于偶聯(lián)的配基
2.溶液制備
A液:0.001M HCl。
B液:0.1M NaHCO3、0.5M NaCl,pH 8.3。
C液:0.1M Tris-HCl,pH 8.0。
D液:0.1M Tris-HCl、0.5M NaCl,pH 9.0。
E液:0.1M 乙酸鈉、0.5M NaCl,pH 3.0。
F液:20%乙醇。
G液:0.02M Na2HPO4、0.5M NaCl, pH 7.0-7.4。
H液:0.1M Glycine-HCl,pH 2.7。
I液:1.0M Tris-HCl,pH 9.0。
3.樣品制備
3.1按0.5-10mg/ml的濃度將待偶聯(lián)樣品溶解在B液中,也可以采用透析/超濾/G25將待偶聯(lián)樣品置換到B液中。
3.2樣品過濾(平均粒徑<45μm,用0.22μm過濾;45μm<平均粒徑<165μm,用0.45μm過濾;平均粒徑>165μm,用 0.8μm過濾)。
4.偶聯(lián)流程
4.1取所需量的介質勻漿液至相應規(guī)格的砂芯漏斗中抽干。
4.2加入2倍介質體積的預冷A液,攪拌均勻后抽干;重復2次。
4.3將介質轉移到相應規(guī)格的反應器中。
4.4將待偶聯(lián)樣品加入到反應器中,室溫條件下溫和攪拌約4h。
4.5將介質轉移到砂芯漏斗中抽干,保存收集容器中偶聯(lián)后的溶液。
4.6加入2倍介質體積的C液,攪拌均勻后抽干;重復2次。
4.7將介質轉移到相應規(guī)格的反應器中, 加入2倍介質體積的C液, 室溫條件下溫和攪拌約4h。
4.8將介質轉移到砂芯漏斗中抽干。
4.9加入2倍介質體積的D液, 攪拌均勻后抽干。
4.10加入2倍介質體積的E液, 攪拌均勻后抽干。
4.11重復“4.9-4.10”2次。
4.12加入2倍介質體積的F液, 攪拌均勻后抽干;重復2次。
4.13將介質轉移到相應規(guī)格的容器中,加入等體積的F液后保存?zhèn)溆谩?/span>
5.偶聯(lián)效率測定
測定偶聯(lián)前后溶液中樣品含量(A280),計算偶聯(lián)效率。
6.純化流程(以XK16/10為例)
6.1采用液滴對液滴(避免引入氣泡)的方式將柱子連接到層析系統(tǒng)上。
6.2用純化水以5ml/min的流速沖洗5個CV。
6.3用G液以5ml/min的流速沖洗10個CV。
6.4將樣品以5ml/min的流速上樣。
6.5用G液以5ml/min的流速沖洗至紫外吸收值平穩(wěn)(10-15個CV)。
6.6用H液以5ml/min的流速洗脫10CV。
6.7用純化水以5ml/min的流速沖洗5個CV。
6.8用F液以5ml/min的流速沖洗5個CV。
7.清洗(取決于待偶聯(lián)樣品的穩(wěn)定性)
7.1用6M鹽酸胍沖洗10CV,立即用純化水沖洗10CV。
7.2用70%乙醇沖洗10CV,立即用純化水沖洗10CV。
7.3用F液沖洗10CV。
8.常見問題
表2:常見問題及解決方案
問題 | 可能原因 | 解決方案 |
偶聯(lián)效率較低 | 1.B液鹽濃度或pH不對 | 檢測B液配制是否正確 |
2.偶聯(lián)時間不夠 | 延長偶聯(lián)時間 | |
3.預活化填料不合適 | 嘗試其它種類的預活化填料 | |
純化時目標物不與介質結合 或結合量較低 | 1.上樣量過載 | 降低上樣量 |
2.上樣流速過快 | 降低上樣流速 | |
3.蛋白或脂類在介質中聚集 | 及時有效地清洗介質 | |
4.樣品在儲存或上樣過程中失活 | 正確儲存待純化樣品以維持樣品的活性 | |
5.配基和目標物結合比例比較低 | 嘗試加大偶聯(lián)時配基濃度 | |
6.配基在偶聯(lián)或清洗過程中降解 | 檢測配基在偶聯(lián)或清洗中的穩(wěn)定性 | |
洗脫時沒有收集到目標物 或只收集到少量目標物 | 1.目標物沒有與介質結合或結合量較少 | 降低上樣流速并檢查介質的結合能力 |
2.洗脫條件不合適 | 更改相應洗脫條件或增強洗脫液的洗脫能力 | |
3.目標物在洗脫液條件下出現(xiàn)聚集沉淀 | 檢測目標物在洗脫液條件(鹽濃度和pH等)下的穩(wěn)定性 | |
目標物純度較低
| 1.樣品沒有經(jīng)過前處理 | 樣品上柱前必須要經(jīng)過離心或過濾 |
2.樣品粘度過高 | 用平衡液適當?shù)南♂寴悠?,降低粘度?/span> | |
3.洗雜不徹底 | 加大洗雜體積直至基線平穩(wěn)并與平衡液一致 | |
4.雜質蛋白或脂類在介質中聚集沉淀 | 及時有效地清洗介質 | |
5.洗脫條件不佳,洗脫流速太快、梯度太陡。 | 優(yōu)化洗脫條件 | |
6.目標物出現(xiàn)降解 | 檢測目標物的穩(wěn)定性 | |
7.柱料裝填效果不佳 | 重新裝填或購買 | |
8.雜質出現(xiàn)非特異性吸附 | 適當選擇添加劑降低非特異性吸附 | |
9.分離柱頂部有較大儲樣體積 | 重新裝柱或降低儲樣體積 | |
10.介質中有微生物生長 | 介質使用完后,請及時正確保存介質 | |
介質載量下降 | 1.上樣流速過快 | 降低上樣流速 |
2.蛋白或脂類在介質中聚集,導致載量下降。 | 及時清洗介質 | |
3.使用次數(shù)過多,配基出現(xiàn)脫落 | 重新偶聯(lián)新的介質 | |
4.樣品在儲存或上樣過程中失活,不能較好的與配基結合 | 正確儲存待純化樣品以維持樣品的活性 | |
色譜峰上升過陡 | 介質裝填過緊 | 重新裝柱 |
色譜峰上升過緩或拖尾 | 介質裝填太松 | 重新裝柱 |
柱床有裂縫或干涸 | 出現(xiàn)泄露或大體積氣泡引入 | 檢查管路是否有泄露或氣泡,重新裝柱 |
液流較慢
| 1.蛋白或脂類聚集 | 及時清洗介質或濾膜 |
2.蛋白沉淀在介質中 | 調整平衡液和洗脫液組分,以維持目標物的穩(wěn)定性和介質的結合效率 | |
3.分離柱中微生物生長 | 所用試劑必須經(jīng)過過濾和脫氣; 樣品上柱前必須離心或過濾 |
9.訂購信息
表3:訂購信息表
產(chǎn)品 | 規(guī)格 | 貨號 |
CNBr Focurose 4FF | 5ml | HQ03030105M |
CNBr Focurose 4FF | 25ml | HQ030301025M |
CNBr Focurose 4FF | 100ml | HQ030301100M |
CNBr Focurose 4FF | 500ml | HQ030301500M |
備注:大規(guī)格包裝產(chǎn)品或其它產(chǎn)品購買,請咨詢本公司當?shù)劁N售或售前技術支持。
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