價(jià) 格:詢價(jià)
規(guī) 格:25ml/100ml/500ml/1L/5L/20L
產(chǎn) 地:中國
貨 號(hào):HQ060308001L
品 牌:匯研生物
為確保產(chǎn)品的性能和無憂的操作,使用前請(qǐng)仔細(xì)閱讀本手冊(cè),有任何疑問請(qǐng)咨詢本公司售后技術(shù)支持或當(dāng)?shù)氐匿N售人員(聯(lián)系方式見附錄)。
1.產(chǎn)品介紹
IDA Focurose FF是利用其螯合的金屬離子與蛋白質(zhì)側(cè)鏈上的某些氨基酸(主要為組氨酸、半胱氨酸、色氨酸)相互作用而進(jìn)行分離純化,適用于His標(biāo)簽蛋白及與金屬離子作用的生物分子的分離純化。
特點(diǎn):
a.快速、簡(jiǎn)單(一步純化)。
b.使用范圍廣、操作簡(jiǎn)單,適合重力柱和預(yù)裝柱(蠕動(dòng)泵或者層析系統(tǒng))。
c.多重選擇,可以螯合不同的金屬離子進(jìn)行使用(例如Ni2+、Cu2+、Zn2+、Fe2+、Co2+、Ca2+等)。
備注:當(dāng)螯合Ca2+時(shí),避免使用磷酸鹽緩沖液(會(huì)形成沉淀)。
表1:IDA Focurose FF 性能參數(shù)
基質(zhì) | 高度交聯(lián)6%的瓊脂糖 |
粒徑范圍 | 45-165μm |
平均粒徑 | 90±5μm |
結(jié)合載量 | ≧30uM Cu2+/ml(介質(zhì)) |
pH穩(wěn)定性* | 3-12(長期) 2-14(短期) |
化學(xué)穩(wěn)定性** | 所有常用水溶液和緩沖液 避免使用螯合劑(例如EDTA、EGTA)和還原劑(例如DTT和DTE) |
流速 | ≧300cm/h |
操作壓力 | ≤0.3MPa |
貯存溶液 | 20%乙醇 |
貯存溫度 | 4-30℃ |
*:此處穩(wěn)定性指的是在未螯合金屬離子時(shí)介質(zhì)的穩(wěn)定性。
**:IDA Focurose FF螯合金屬離子后,在使用過程中避免使用螯合劑和還原劑。
2.螯合(以XK16/10為例)
2.1采用液滴對(duì)液滴(避免引入氣泡)的方式將柱子連接到層析系統(tǒng)上。
2.2用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
2.3用0.1M 金屬離子溶液以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
2.4用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
2.5用20%乙醇以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
3.溶液制備
平衡液:0.02M PB、0.5M NaCl、0.02-0.04M Imidazole,pH 7.4。
洗脫液:0.02M PB、0.5M NaCl、0.5M Imidazole,pH 7.4。
備注:當(dāng)純化包涵體時(shí),溶液中要添加8M Urea或6M Gua-HCl。
4.樣品制備
4.1樣品所在溶液要和平衡液保持一致,可以用平衡液進(jìn)行裂解、透析/超濾/G25進(jìn)行緩沖液置換。
4.2樣品過濾(平均粒徑<45μm,用0.22μm過濾;45μm<平均粒徑<165μm,用0.45μm過濾;平均粒徑>165μm,用 0.8μm過濾)。
5.純化流程(以XK16/10為例)
5.1采用液滴對(duì)液滴(避免引入氣泡)的方式將柱子連接到層析系統(tǒng)上。
5.2用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
5.3用洗脫液以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
5.4用平衡液以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
5.5將樣品以5ml/min的流速上樣。
5.6用平衡液以5ml/min的流速?zèng)_洗至紫外吸收值平穩(wěn)(10-15個(gè)CV)。
5.7用洗脫液以5ml/min的流速洗脫5CV或20CV(階梯式洗脫5CV/線性梯度洗脫20CV)。
6.再生(以XK16/10為例)
6.1用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
6.2用剝離液以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
6.3 用平衡液以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
6.4 用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
6.5 用0.1M 金屬離子溶液以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
6.6 用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
6.7 用平衡液以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
6.8 用20%乙醇以5ml/min的流速?zèng)_洗5個(gè)CV。
備注:剝離液,0.02M PB、0.5M NaCl、0.05 EDTA,pH 7.4。
7.清洗(以XK16/10為例)
7.1 參照6.1-6.4操作將金屬離子剝離。
7.2 用1.5M NaCl以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
7.3 用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
7.4 用1.0M NaOH以2.5ml/min的流速?zèng)_洗30個(gè)CV。
7.5 用平衡液以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
7.6 用純化水以5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
7.7 用30%異丙醇以2.5ml/min的流速?zèng)_洗10個(gè)CV。
7.8 參照6.4-6.8操作將金屬離子螯合。
8.常見問題
表2:常見問題及解決方案
問題 | 可能原因 | 解決方案 |
純化時(shí)目標(biāo)物不與介質(zhì)結(jié)合 或結(jié)合量較低 | 1.上樣量過載 | 降低上樣量 |
2.上樣流速過快 | 降低上樣流速 | |
3.蛋白或脂類在介質(zhì)中聚集影響結(jié)合 | 及時(shí)有效地清洗介質(zhì)或更換新的介質(zhì) | |
4.表達(dá)條件過于劇烈,His標(biāo)簽被包裹,不能與介質(zhì)結(jié)合 | 建議做一個(gè)空載體作為表達(dá)和純化的對(duì)照,確定表達(dá)條件是否合適 | |
5.初始樣品中沒有組氨酸標(biāo)簽蛋白 | 通過基因序列或His標(biāo)簽抗體核實(shí) | |
6.目標(biāo)蛋白出現(xiàn)在流穿中 | 目標(biāo)蛋白沒有成功表達(dá)或樣品與平衡液中pH及組分不正確 | |
洗脫時(shí)沒有收集到目標(biāo)物 或只收集到少量目標(biāo)物 | 1.目標(biāo)物沒有與介質(zhì)結(jié)合或結(jié)合量較少 | 先確認(rèn)目標(biāo)物是否與介質(zhì)結(jié)合 |
2.洗脫條件不合適 | 加大洗脫液中咪唑濃度 | |
3.洗脫時(shí)間不夠 | 降低流速,延長洗脫液的保留時(shí)間 | |
4.洗脫體積過小 | 加大洗脫體積 | |
5.洗雜時(shí),目的蛋白被洗下來 | 降低洗雜液中的咪唑濃度 | |
6.目標(biāo)物在洗脫液條件下出現(xiàn)聚集沉淀 | 檢測(cè)目標(biāo)物在洗脫液條件(pH和鹽濃度)下的溶解度和穩(wěn)定性。可以嘗試在洗脫液中加入一些添加劑:如0.2% Triton X-100或0.5% Tween 20 | |
目標(biāo)物純度較低
| 1.樣品沒有經(jīng)過前處理 | 樣品上柱前必須要經(jīng)過離心或過濾 |
2.樣品粘度過高 | 用平衡液適當(dāng)?shù)南♂寴悠?,降低粘度?/span> | |
3.洗雜不徹底 | 加大洗雜體積直至基線平穩(wěn)并與平衡液一致 | |
4.雜質(zhì)蛋白或脂類在介質(zhì)中聚集沉淀 | 及時(shí)有效地清洗介質(zhì) | |
5.雜質(zhì)與Ni2+具有較高的親和力。 | 用其它類型介質(zhì)進(jìn)行純化(如離子或分子篩) | |
6.目標(biāo)物出現(xiàn)降解 | 檢測(cè)目標(biāo)物的穩(wěn)定性并加入蛋白酶抑制劑 | |
7.柱料裝填效果不佳 | 重新裝填或購買 | |
8.雜質(zhì)與介質(zhì)出現(xiàn)非特異性吸附 | 適當(dāng)選擇添加劑降低非特異性吸附,可以嘗試在樣品中加入一些添加劑:如0.5%Triton X-100、1.0% Tween 20或50%甘油 | |
9.分離柱頂部有較大儲(chǔ)樣體積 | 重新裝柱或降低儲(chǔ)樣體積 | |
10.介質(zhì)中有微生物生長 | 介質(zhì)使用完后,請(qǐng)及時(shí)正確保存介質(zhì) | |
介質(zhì)載量下降 | 1.上樣流速過快 | 降低上樣流速 |
2.蛋白或脂類在介質(zhì)中聚集,導(dǎo)致載量下降。 | 及時(shí)清洗介質(zhì) | |
3.使用次數(shù)過多 | 更換新介質(zhì) | |
4.表達(dá)條件過于劇烈,His標(biāo)簽被包裹,不能較好與介質(zhì)結(jié)合 | 建議做一個(gè)空載體作為表達(dá)和純化的對(duì)照,確定表達(dá)條件是否合適 | |
色譜峰上升過陡 | 介質(zhì)裝填過緊 | 重新裝柱 |
色譜峰上升過緩或拖尾 | 介質(zhì)裝填太松 | 重新裝柱 |
柱床有裂縫或干涸 | 出現(xiàn)泄露或大體積氣泡引入 | 檢查管路是否有泄露或氣泡,重新裝柱 |
液流較慢 | 1.蛋白或脂類聚集 | 及時(shí)清洗介質(zhì)或?yàn)V膜 |
2.蛋白沉淀在介質(zhì)中 | 調(diào)整平衡液和洗脫液組分,以維持目標(biāo)物的穩(wěn)定性和介質(zhì)的結(jié)合效率 | |
3.分離柱中微生物生長 | 所用試劑必須經(jīng)過過濾和脫氣; 樣品上柱前必須離心或過濾 |
9.訂購信息
表3:訂購信息表
產(chǎn)品 | 規(guī)格 | 貨號(hào) |
IDA Focurose FF | 25ml | HQ060308025M |
IDA Focurose FF | 100ml | HQ060308100M |
IDA Focurose FF | 500ml | HQ060308500M |
IDA Focurose FF | 1L | HQ060308001L |
IDA Focurose FF | 5L | HQ060308005L |
IDA Focurose FF | 20L | HQ060308020L |
備注:大規(guī)格包裝產(chǎn)品或其它產(chǎn)品購買,請(qǐng)咨詢本公司當(dāng)?shù)劁N售或售前技術(shù)支持。
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